北京非動物源熱原檢測體系

來源：發布時間：2025-10-03

傳統熱原檢測方法的局限性十分明顯：鱟試驗法只能特異性識別細菌內毒素，對非內毒素熱原完全無響應；家兔熱原試驗雖能篩查全類型熱原，但靈敏度低（檢測限≥5EU/kg），無法檢出微量非內毒素熱原，且無法區分熱原類型，難以追溯污染源頭；單核細胞活化反應測定（MAT）的出現有效解決了上述難題，其關鍵優勢在于：基于人源單核細胞的免疫應答機制，可同時識別所有具備生物活性的熱原（包括內毒素與非內毒素），且檢測靈敏度高（對病毒熱原檢測限低至pg級）；檢測周期短（24-48小時），可滿足產品快速放行需求；能通過細胞因子濃度定量評估熱原活性，避免“無活性熱原”的誤判。

選擇熱原檢測單核細胞活化反應測定法，即是選擇更準確、更安全、更可持續的檢測方案。北京非動物源熱原檢測體系

中國藥典與歐洲藥典對 MAT 熱原檢測的細胞類型及復孔數有明確要求，且存在細節差異。細胞類型上，兩者均認可人全血、PBMC（外周血單個核細胞，至少 4 個供體，歐洲藥典建議 8 個供體），中國藥典明確將單核細胞系納入，歐洲藥典則要求單核細胞系需做支原體污染檢測、細胞鑒別等；檢測方法均為 “熱原刺激細胞 + ELISA 檢測 IL-6/IL-1β/TNF-α”。復孔數方面，兩者均規定平行孔≥4、濃度點≥4，中國藥典額外要求標曲 r≥0.90，主要目的是通過多重復孔抵消 PBMC 的不穩定性，確保熱原檢測結果準確可靠。

江蘇化學制藥熱原檢測結果判定生物制品的高蛋白、螯合劑基質易對鱟試驗產生抑制，rCR與MAT聯合策略可消除干擾并控制熱原。

MAT 法熱原檢測中，細胞傳代的代次控制是保障檢測穩定性的關鍵，需結合細胞特性與文獻數據制定標準。參考行業文獻，單核細胞系（如 HL-60、THP1）的使用代次通常不超過 20 代，代次過高會導致細胞生物學特性改變：一是 TLR 受體表達下降，如 TLR4 表達量在 20 代后下降 40%，導致內毒素檢測靈敏度降低；二是細胞倍增時間延長，從 24 小時延長至 36 小時，影響共培養時長的準確性；三是炎癥因子分泌減少，IL-6 分泌量在 20 代后下降 35%，導致熱原濃度低估。申科對配套的 HL-60 細胞系進行代次穩定性驗證，結果顯示：1-15 代細胞的熱原響應性一致（加標回收率 85%-125%），16-20 代回收率波動至 70%-130%，21 代后回收率 < 70%，因此建議控制在 1-15 代使用。實驗室需建立細胞代次記錄制度，每傳代 1 次記錄代次，達到 15 代后及時更換新批次細胞，并驗證新批次細胞與舊批次的一致性（如檢測同一樣品，結果偏差≤20%），確保不同代次細胞的檢測結果穩定。

MAT 法熱原檢測標曲采用非倍比稀釋，而非 1-0.5-0.25 的倍比稀釋，主要優勢在于提升標曲準確性與適用性，避免稀釋誤差影響。一是可密集覆蓋關鍵濃度區間：熱原檢測的重點關注區為低濃度拐點（如 0.0125-0.1EU/mL）與高濃度平臺區（如 0.5-1EU/mL），非倍比稀釋可在這些區間設置更多濃度點（如 0.0125、0.025、0.05、0.1、0.25、0.5、1EU/mL），提升曲線擬合精度，而倍比稀釋低濃度點少，易導致低濃度熱原定量不準。二是降低稀釋誤差累積：倍比稀釋需連續稀釋（如 1EU/mL→0.5EU/mL→0.25EU/mL），每一步誤差會累積，導致低濃度點實際濃度偏離理論值；非倍比稀釋通過單獨配制每個濃度點（如直接用標準品配制 0.025EU/mL），避免誤差累積，提升標曲可靠性。三是適配不同樣品濃度：非倍比稀釋可根據樣品預期濃度調整標曲范圍，如樣品預期濃度 0.05EU/mL，可增加 0.025、0.05、0.1EU/mL 點，確保樣品濃度落在標曲線性區，而倍比稀釋范圍固定，靈活性差。這些優勢使非倍比稀釋成為 MAT 法標曲配制的優先選擇方式。

基于人體免疫機制的 MAT 熱原檢測，為熱原檢測提供了新的可靠途徑。

在 MAT 法熱原檢測中，PBMC（外周血單核細胞）與單核細胞系各有優劣，單核細胞系更適合標準化檢測。PBMC 的優勢在于免疫細胞成分豐富（含單核細胞、淋巴細胞等），對熱原反應敏感，靈敏度相對較高；但局限同樣明顯 ——PBMC 需從不同供體獲取，供體免疫狀態差異會導致檢測結果不穩定，且無法長期保存，難以建立標準化方法學。單核細胞系（如 HL-60、MM6、THP1）則克服了 PBMC 的局限：細胞來源穩定（可批量培養），TLR 受體表達覆蓋主要亞型（如 HL-60 表達 TLR1-TLR9），對熱原反應重復性好，更適合商業化試劑盒與法規檢測。不同單核細胞系性能也有差異：MM6/IL-6 法檢測限約 0.05EU/mL，THP1/TNF-α 法因 TNF-α 為一級免疫效應物檢測限更低，但 TNF-α 穩定性差；HL-60/IL-6 法檢測限與穩定性均優于前兩者，成為主流選擇。湖州申科生物MAT試劑盒選用 HL-60 細胞系，正是基于其優異的穩定性與熱原響應適配多場景，確保不同批次檢測結果一致。

家兔法是熱原檢測 “金標準”，但操作繁瑣、耗時且需動物設施，存在明顯局限。江蘇生物制品熱原檢測MAT法

湖州申科 MAT法熱原檢測試劑盒細胞復融后可直接使用，無需離心復蘇，24 小時內出檢測結果。北京非動物源熱原檢測體系

熱原檢測技術自 20 世紀初問世以來，經歷了 “動物試驗→體外生化檢測→細胞生物學檢測” 的三次關鍵變革，每一次變革均推動檢測效率、準確性與全面性的提升。20 世紀初至中期，熱原檢測方法只有家兔熱原試驗，通過觀察家兔體溫變化篩查熱原，雖實現了廣譜檢測，但存在動物成本高、操作繁瑣、靈敏度低、種屬差異大等局限，難以滿足制藥行業快速發展需求。20 世紀 60 年代，鱟試驗法（LAL 法）的發明開啟了熱原檢測的 “體外生化時代”，利用鱟血變形細胞裂解物的凝血級聯反應檢測細菌內毒素，靈敏度提升至 ng 級，檢測時間縮短至 1-2 小時，迅速成為制藥行業常規質控方法；但該方法依賴鱟資源，易受 β- 葡聚糖干擾，且只能檢測內毒素，無法覆蓋非內毒素熱原。21 世紀以來，重組技術與細胞生物學技術的發展推動熱原檢測進入 “全熱原管控時代”：重組級聯試劑（rCR）與重組 C 因子試劑（rFC）通過基因工程技術制備，擺脫對鱟資源的依賴，消除葡聚糖干擾，實現標準化生產；單核細胞活化反應測定（MAT）利用人源單核細胞檢測全類型熱原，填補非內毒素熱原檢測空白，且結果更貼近人體實際反應。

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標簽：宿主細胞蛋白（HCP）殘留檢測內毒素檢測熱原檢測宿主細胞殘留DNA檢測

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