上海熱原檢測單核細胞活化反應測定法

來源：發布時間：2025-10-30

MAT 試劑盒熱原檢測配套細胞的質量控制，是保障檢測結果可靠的重要環節，需從功能、安全性、穩定性三方面建立體系。在功能鑒定上，按歐洲 MAT 法要求，需檢測細胞的 Toll 樣受體（TLR1-TLR9）表達情況—確保細胞能響應不同類型熱原（如 TLR4 響應 LPS、TLR2/6 響應脂磷壁酸）；同時考察細胞倍增時間（確保活性穩定）、熱原反應性（對標準內毒素和非內毒素熱原的信號強度），確保細胞具備熱原識別與炎癥因子分泌能力。在安全性檢測上，需驗證細胞無菌（無細菌、真菌污染）、無支原體、無外源病毒因子（如 HIV、HBV）及分枝桿菌，避免外源污染影響檢測結果。在穩定性考察上，需監測不同代次細胞的熱原刺激敏感性，一般要求細胞使用代次不超過 20 代，代次過高會導致 TLR 表達下降、炎癥因子分泌減少，影響檢測靈敏度。湖州申科的配套細胞還額外通過 Western blot 驗證 TLR 受體表達量，并用不同非內毒素熱原配體刺激驗證響應性，形成全維度質量控制，確保細胞適配熱原檢測需求。

熱原具有頑強穩定性、耐熱性（180℃/2h才能破壞）、水溶性、濾過性，可穿透常規滅菌屏障。上海熱原檢測單核細胞活化反應測定法

傳統細菌內毒素檢查法（BET）只能檢測革蘭氏陰性菌的 LPS，無法識別革蘭氏陽性菌 LTA、真菌酵母多糖、病毒鞭毛蛋白等非內毒素熱原，存在漏檢風險；同時，部分樣品（如脂質體、表面活性劑制劑）會因內毒素吸附導致低內毒素回收（LER），BET法難以準確定量。MAT 法通過單核細胞表面的多種 TLR 受體（TLR1-TLR10），可識別不同類型熱原：TLR4 識別 LPS、TLR2/TLR6 識別 LTA 與酵母多糖、TLR5 識別鞭毛蛋白、TLR3 識別病毒 dsRNA 等，實現 “全熱原覆蓋”。湖州申科生物熱原檢測試劑盒（MAT法）的驗證數據顯示，其對不同濃度非內毒素熱原均有響應：如 0.1-100μg/mL 鞭毛蛋白可檢測到 0.005-0.035EU/mL熱原活性，0.1-10μg/mL LTA 對應 0.1-0.7EU/mL 熱原活性，1-100μg/mL 雷西莫特（TLR7/8 配體）對應 0.5-3.0EU/mL 熱原活性。此外，MAT法檢測的是熱原的生物活性（而非單純 LPS 含量），可避免 LER 導致的假陰性，為CGT等高風險產品提供更有保障的熱原檢測方案。

疫苗熱原檢測技術服務進行熱原實驗時，樣品有效稀釋倍數上限應通過干擾實驗確定，既保護細胞活性又保證熱原檢測靈敏度。

熱原檢測MAT法的法規地位持續提升，已成為多國藥典認可的熱原檢測替代方法。歐洲藥典（EP）是推動 MAT 應用的關鍵力量：通則 2.6.30 明確 MAT 可替代家兔熱原試驗（RPT），且能同時檢測內毒素與非內毒素熱原；2024 年歐洲藥典委員會批準刪除所有條款中的家兔法，修訂文本將于 2025 年7月1日生效，強制鼓勵使用 MAT 等體外替代方法。美國藥典（USP）<151> 規定，經驗證的體外熱原試驗（如 MAT）可替代家兔法，且需依據 USP<1225>開展驗證；FDA 行業指南進一步明確 MAT 的合規性。中國藥典 2020 年版通則 9301 將 MAT 列為熱原檢查的補充方法，雖暫未替代家兔法，但明確其適用于復雜基質樣品的全熱原篩查。此外，ISO 10993-1、ICCVAM 等國際標準也優先推薦體外熱原檢測模型，全球法規協同推動 MAT 成為熱原檢測的主流技術。

MAT 法熱原檢測的穩定性需從細胞、試劑、操作、樣品四維度嚴格把控。細胞層面，細胞活性與純度直接決定熱原響應能力，活性不足會減少炎癥因子分泌，純度低則引入雜細胞干擾；細胞批次間一致性也關鍵，TLR 受體表達、倍增時間差異會導致結果波動。試劑與耗材方面，標準品效價需溯源國際標準，避免降解影響標曲；試劑盒中細胞因子需質控，防止外源熱原污染；培養液、緩沖液及無熱原耗材（吸頭、西林瓶）若熱原控制不當，易引發假陽性。操作上，加樣手法要統一（如 8 通道移液器液面一致），孵育需 37℃、5% CO?穩定環境，試劑配制濃度準確，設備（酶標儀、洗板機）定期校準，操作偏差會直接導致異常。樣品層面，自身干擾物質（消除炎癥成分、高鹽）、pH 偏離 6-8 或微生物污染，會抑制細胞活化或引入外源熱原，需針對性預處理。

湖州申科MAT試劑盒適用于生物制品、化學制藥、原料藥、化妝品、醫療器械的熱原檢測。

熱原是指微量即可引發恒溫動物體溫異常升高的物質，分為內源性（如細胞因子）與外源性兩類，外源性熱原又涵蓋微生物來源（革蘭氏陰性菌脂多糖 LPS、革蘭氏陽性菌脂磷壁酸 LTA、病毒、真菌等）與非微生物來源（灰塵、橡膠降解產物等）。傳統細菌內毒素檢查法（BET）只能檢測革蘭氏陰性菌的 LPS，無法覆蓋非內毒素熱原，而單核細胞活化試驗（MAT）可彌補這一缺陷。其原理是：熱原通過活化單核細胞表面的 Toll 樣受體（TLR，如 TLR4 識別 LPS、TLR2/TLR6 識別 LTA），啟動先天免疫反應，促使細胞釋放 IL-6、TNF-α 等促炎細胞因子；隨后采用 ELISA 法檢測 IL-6 濃度，結合 LPS 標準曲線推算樣品中總熱原含量，實現對內毒素與非內毒素熱原的同步檢測，契合《中國藥典》9301 指導原則中全場景防控熱原風險”的要求。

熱原檢測采用人外周血單核細胞（PBMC），優勢是天然受體譜系完整，但供體差異導致變異系數（CV）高達25%。湖北生物制品熱原檢測

PBMC（外周血單個核細胞）用于 MAT 檢測時供體差異大，IL-6 釋放波動明顯，標準化難度高于單核細胞系。上海熱原檢測單核細胞活化反應測定法

含消除炎癥成分的樣品可能抑制 IL-6 產生，需通過科學評估排除干擾，確保 MAT 法熱原檢測結果準確。根據藥典要求，若樣品能抑制單核細胞促炎癥因子釋放，需通過以下步驟驗證適用性：首先，選擇樣品 A、2A、4A 倍稀釋（均不超過上限有效稀釋倍數 MVD），避免高濃度消除炎癥成分過度抑制；其次，進行供試品加標回收率實驗，若回收率在 50%-200% 的合格范圍，說明消除炎癥成分未影響熱原檢測；再對比 “供試品配制的標曲” 與 “稀釋液配制的標曲”，若兩者 IL-6 檢測值相差在 ±20% 以內，表明樣品基質對檢測無系統性干擾。例如，某消除炎癥單抗樣品經 2 倍稀釋后，加標回收率達 120%，兩種標曲 IL-6 值相差 15%，判定可適用 MAT 法。若出現回收率偏低（<50%），可嘗試增加稀釋倍數（如 8A 倍）或采用熱滅活（若樣品耐熱）去除消除炎癥活性；若仍無法排除干擾，需結合家兔法進行對比驗證，避免因消除炎癥成分導致假陰性。

上海熱原檢測單核細胞活化反應測定法

標簽：內毒素檢測宿主細胞殘留DNA檢測熱原檢測宿主細胞蛋白（HCP）殘留檢測

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